调查日期:__________________________ 调查者:____________________
附表6:
伊蚊登革病毒分离送检登记表
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│ 编号 │捕蚊日│ 地点 │是否病│ 数量 │ 蚊种 │备注│
│ │ 期 │ │ 家 │ │ │ │
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│ │ │ │ │ │ │ │
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│ │ │ │ │ │ │ │
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│ │ │ │ │ │ │ │
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送检单位:_______________________________________________________
送检人:______________________ 送检日期:_______________________
接收单位:_______________________________________________________
接收人:_____________________ 接收日期:_______________________
附表7:
疑似登革热病人检材送检一览表
┌─┬──┬─┬─┬─┬──┬──┬──┬──┬──┬──┬──┬─┐
│编│患者│性│年│职│住址│联系│临床│发病│取材│检材│检验│备│
│号│姓名│别│龄│业│ │电话│诊断│日期│日期│种类│项目│注│
├─┼──┼─┼─┼─┼──┼──┼──┼──┼──┼──┼──┼─┤
│ │ │ │ │ │ │ │ │ │ │ │ │ │
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│ │ │ │ │ │ │ │ │ │ │ │ │ │
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│ │ │ │ │ │ │ │ │ │ │ │ │ │
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│ │ │ │ │ │ │ │ │ │ │ │ │ │
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送检单位:___________________________________________________
送检人: ______________ 送检日期:__________________________
接收单位:___________________________________________________
接收人:_____________________________________________________
附表8:
病原学检测结果一览表
监测点名称: 国标码:□□□□□□
┌──┬──┬──┬───┬────────┬──┬────┬───┐
│标本│标本│采集│采集人│ 检测结果 │型别│检测日期│检测人│
│编号│类型│日期│ ├──┬──┬──┤ │ │ │
│ │ │ │ │核酸│病毒│序列│ │ │ │
│ │ │ │ │检测│分离│测定│ │ │ │
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注:对于核酸检测中的序列测定,报送结果中应包括原始测序彩图文件和序列文件的电子版拷贝。
填表时间:______年___月___日 单位(盖章):______________;
填表人:_________________
附表9:疑似登革热病例送检表(临床)
送检单编号:___________
┌─────────────────────────────────┐
│ 疑似登革热病例送检单 │
│ 送检或住院号:____________ 检验室编号:____________ │
│ 姓名:____________ 性别:______ 年龄:________ │
│ 地址:____________________________________ │
│ 入院日期:____________ 发病日期:____________ │
│ 临床诊断:____________ │
│入院主诉:________________________________________________ │
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│ │
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│临床表现: │
│1.发热:______℃(最高)持续:______天 │
│2.头痛:(1)有;(2)无 │
│3.关节、肌肉痛:(1)有;(2)无 │
│4.束臂试验:______,皮肤淤点:______ 鼻衄:______ 呕血:_____│
│_ 其它出血:______ │
│5.血压:______kPa │
│6.脉搏:______/分钟 │
│流行病学史: │
├─────────────────────────────────┤
│临床化验: │
│血小板:______×109(起病后第______天) │
│红细胞压积:_________________ │
├─────────────────────────────────┤
│血标本: │
│采血日期:___________(1)入院时 (2)出院时 (3)恢复期 │
│检测项目:(1)登革热病毒分离 (2)登革热抗体检测 │
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│ │
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│送检医师:__________单位:_____________________________ │
│送检日期:_______________ │
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附件1:
免疫荧光法(IFA)检测IgG抗体
试验材料:
(1)DV1~4型抗原片:DV标准毒株感染C6/36或BHK21细胞制备,低温干燥保存;
(2)对照:登革热患者恢复期血清(阳性对照),非登革热患者血清阴性对照);
(3)羊抗人(或兔抗人)IgG荧光素标记抗体;
(4)常用稀释液:pH7.2~7.4PBS、伊文思兰等;
(5)荧光显微镜。
检测步骤:
(1)用pH7.4,0.02mol/LPBS稀释待检血清,从1:20开始做4倍连续稀释至需要的稀释度。
(2)取出抗原片,用蒸馏水漂洗后,冷风吹干。
(3)用加样器依次从高稀释度到低稀释度逐个加入已稀释的待检血清,加入量以覆盖细胞抗原面为准(若为双份血清,最好上排为急性期血清,下排为恢复期血清),在37℃水浴箱湿盒孵育30分钟(每次试验设阳、阴性对照)。
(4)用PBS震荡洗涤3次,每次5分钟,再用蒸馏水洗涤1次脱盐,冷风吹干。
(5)用含1:3万的伊文思兰PBS按工作浓度稀释荧光结合物,滴加各孔(以覆盖细胞抗原面为准),在37℃水浴箱湿盒孵育30分钟,然后同(4)洗涤、漂洗、吹干。
(6)荧光显微镜观察结果。
结果判断:
细胞内病毒特异性荧光为黄绿色颗粒,分布在感染细胞的胞浆内。根据特异性荧光颗粒多少、荧光亮度、阳性细胞在细胞总数中所占比例,可将免疫荧光反应大致区分为1~4个“+”。
检测抗体滴度时,以能观察到明显特异性荧光反应(>“+”)最高血清稀释度的倒数表示。
意义:
阳性结果,表明曾受到DV感染,>1:80有诊断参考意义;
恢复期血清抗体滴度比急性期抗体滴度有4倍或4倍以上升高则可确诊。
附件2:酶联免疫吸附试验(ELISA)
检测单份和/或双份血清IgG抗体
试验材料:
(1)抗原:
阳性抗原:采用C6/36细胞感染登革病毒培养物为阳性抗原。
阴性抗原:未接种病毒的正常C6/36细胞为阴性抗原对照。
(2)辣根过氧化物酶标记的抗人IgG抗体;
(3)缓冲液:
包被液:pH9.6碳酸缓冲液;
稀释液:pH7.4PBS(含5%脱脂奶)
洗涤液:pH7.4PBS-T(0.05%吐温-20);
(4)显色液:A/B液
(5)终止液:4NH2SO4
(6)酶标板、酶标仪。
检测步骤:
(1)用包被液按工作浓度稀释抗原,100μl/孔,4℃过夜;
(2)弃去包被液,用PBS-T重复洗涤3~5次,甩干;
(3)将待检血清用稀释液从1:100开始作2或4倍连续稀释,加入抗原孔,100μl/孔,同时设阴、阳性对照,37℃水浴1小时;
(4)弃去血清,用洗涤液洗涤5~6次;
(5)加酶结合物,用稀释液按工作浓度稀释,100μl/孔,37℃水浴1小时;
(6)弃去酶标抗体,用洗涤液洗涤6次,甩干;
(7)加显色液:于各反应孔内加A/B液各一滴,37℃,避光3~5分钟;
(8)加终止液于每反应孔,100μl/孔。
结果判断:
于450nm(TMB)阳性对照孔OD值/阴性对照孔OD值,即P/N≥2.1,对照成立;若待检血清孔OD值与阴性对照孔OD比值≥2.1,则标本为登革热IgG抗体阳性,反之阴性。(阴性对照孔OD值小于0.05按0.05记,若大于0.05按实际数值计算)
意义:
阳性结果,表明曾受到DV感染,>1:100有诊断参考意义;
恢复期血清抗体滴度比急性期抗体滴度有4倍或4倍以上升高则可确诊。
附件3:IgM捕捉ELISA法(MacELISA)检测登革热IgM抗体
试验材料:
(1)抗原:
阳性抗原:采用C6/36细胞感染登革病毒培养物为阳性抗原。
阴性抗原:未接种病毒的正常C6/36细胞为阴性抗原对照。
(2)抗人IgM(μ链)单克隆抗体或多克隆抗体;
(3)登革病毒IgM阳性、阴性对照血清;
(4)辣根过氧化物酶标记登革病毒单克隆抗体;
(5)缓冲液:
洗涤液:pH7.4PBS-T(0.05%吐温-20);
稀释液:pH7.4PBS(5%牛血清);
封闭液:pH9.6碳酸缓冲液(1%牛血清白蛋白);
(6)显色液:A/B液
(7)终止液:4NH2SO4
(8)酶标板、酶标仪。
检测步骤:
(1)用稀释液按效价稀释抗人μ链单克隆抗体,100μl/孔,加盖,4℃过夜;
(2)弃去抗人μ链,用洗涤液重复洗3次,甩干,加封闭液,100μl/孔,置37℃水浴孵育2小时;
(3)弃封闭液,用洗涤液重复洗3次,甩干。
(4)将待检血清用稀释液从1:10开始作2或4倍连续稀释,加入酶标板孔中,100μl/孔,同时加入已1:10稀释的阳性血清、阴性血清对照各4孔,100μl/孔,置37℃水浴孵育2小时;
(5)弃去血清,用洗涤液重复洗3次,甩干,分别加4个型DV抗原及阴性抗原对照,100μl/孔,4℃过夜;
(6)弃抗原,用洗涤液重复洗3次,甩干,加用稀释液稀释至工作浓度的相应的登革热酶标单克隆抗体,正常抗原加4个型混合的酶标单克隆抗体,100μl/孔,37℃水浴2小时;
(7)弃去标记物,用洗涤液重复洗3次,甩干,于各反应孔内加A/B液各一滴,37℃,避光3~5分钟;
(8)加终止液于每反应孔,一滴/孔。
结果判断:
(1)目测方法:
阳性对照孔呈明显蓝色,阴性对照孔呈无色,对照成立;若待检血清孔呈明显淡蓝色或深蓝色(TMB),则标本为登革热IgM抗体阳性,反之阴性。
(2)酶联免疫检测仪检测:
于450nm(TMB)阳性对照孔OD值/阴性对照孔OD值,即P/N≥2.1,对照成立;若待检血清孔OD值与阴性对照孔OD比值≥2.1,则标本为登革热IgM抗体阳性,反之阴性。(阴性对照孔OD值小于0.05按0.05记,若大于0.05按实际数值计算)
意义:
阳性结果,表明患者新近DV感染,用于登革热早期诊断。
附件4:C6/36(或BHK21)细胞分离登革热病毒
标本:
(1)患者血清:无菌采集发病后5日内登革患者静脉血3ml,分离血清,接种细胞培养;不能及时接种细胞者可置-70℃保存。污染的血清要加双抗(青霉素、链霉素,终浓度各1000U/ml),4℃2小时处理后接种细胞。
(2)尸检材料:脑、肝等。
(3)蚊:采集吸过血的伊蚊或其它可疑媒介蚊,用0.5mol/L(10%)葡萄糖液喂养,至胃血完全消化后置-70℃保存,死后按蚊种及捕获地点分组,5~10只/组,生理盐水冲洗数次后,用研磨器研碎,每组加0.5mlHank’s液,2000转/分钟离心15分钟,取上清加双抗(青霉素、链霉素,终浓度各1000U/ml),4℃过夜,备用。
病毒分离:
将培养好的单层细胞上清弃掉,用Hank’s液洗涤2遍,接种用Hank’s液稀释成10-1的患者血清0.1ml或组织悬液或蚊悬液0.2ml。C6/36细胞在28℃吸附1小时,BHK21细胞在37℃吸附1小时,补加维持液,C6/36细胞在28℃培养,BHK21细胞在37℃培养。第二天开始观察细胞病变情况。一般BHK21细胞4天左右出现病变,C6/36细胞需要在28℃培养7天。如果没有细胞病变,则盲传3代(每次取细胞悬液0.1ml)接种细胞传代。按附件6进行鉴定。
附件5:乳鼠分离登革热病毒
标本:
同附件4。
病毒分离:
(1)每一检材接种一窝1~2日龄乳鼠,脑内接种0.01ml/只。接种后48小时内死亡者按非特异性死亡处理,弃去。
(2)存活者观察10天,若仍未发病,则解剖其中2只,取脑,用pH8.0肉汤制成10%悬液,盲传一窝1~2日龄乳鼠,存活鼠和盲传鼠均观察到第4周,未发病为阴性结果;
(3)在观察期内发病(活动力降低、站立不稳、肢体抽搐、不全麻痹等症状)者,解剖,取半边脑,按盲传法制成10%悬液,接种一窝1~2日龄乳鼠,并作无菌试验;另半边脑置5.43mol/L(50%)甘油缓冲液中低温保存。无菌试验阴性而重复以上症状者作为可以毒种传代、保存,并按附件6进行鉴定。
附件6:免疫荧光法检测DV抗原
材料:
(1)细胞抗原片的制备:
出现“++”细胞病变的C6/36细胞或BHK21细胞倒去维持液(若盲传无细胞病变出现,仍然按此方法制备),用pH7.2PBS洗涤2次,加PBS用滴管把细胞从管壁上吹下,吹散,2000转/分钟离心5分钟,弃去PBS,沉渣用0.2mlPBS吹散,滴加在抗原片上,吹干,冷丙酮固定10分钟,PBS冲洗2次,蒸馏水漂洗1次,吹干,-20℃保存备用;
(2)脑、肝组织片:冷冻切片机切片,吹干,冷丙酮固定10分钟,PBS冲洗2次,蒸馏水漂洗1次,吹干,-20℃保存备用;
(3)荧光标记单克隆抗体;
(4)荧光显微镜。
方法:
(1)制备的抗原片或组织片,吹干,按顺序滴加4个型的荧光标记单克隆抗体,2孔/型,对照2孔(加PBS),置湿盒内37℃水浴30分钟;
(2)取出,用PBS冲洗3次,蒸馏水漂洗1次,吹干;
(3)荧光显微镜观察结果。
结果判断:
特异性免疫荧光呈黄绿色颗粒,分布在胞浆中,正常组织细胞呈橙红色或暗红。
意义:
从病人血清、组织或蚊媒中分离出DV或查到抗原,可确诊DV感染和病毒型别。
附件7:RT-PCR检测DV基因及分型
材料:
(1)附件6和分离的DV
(2)引物:(供参考)
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│ 引物 │ 序列(5’~3’) │靶序列(基因)│片段(bp)│
│ │ │ │ │
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│1~4通用引物│+)GTGCACACATTGACAGAACA │ NS1 │ 539 │
├──────┼─────────────┤ │ │
│ │—)CTTTCTATCCAATAACCCAT │ │ │
├──────┼─────────────┼───────┼─────┤
│型特异性引物│ │ │ │
├──────┼─────────────┼───────┼─────┤
│ DEN-1 │+)GGACTGCGTATGGAGTTTTG │ E-NS1 │ 490 │
├──────┼─────────────┤ │ │
│ │—)ATGGGTTGTGGCCTAATCAG │ │ │
├──────┼─────────────┼───────┼─────┤
│ DEN-2 │+)GTTCCTCTGCAAACACTCCA │ E │ 230 │
├──────┼─────────────┤ │ │
│ │—)GTGTTATTTTGAGTTTCCTTG │ │ │
├──────┼─────────────┼───────┼─────┤
│ DEN-3 │+)GTGCTTACACAGCCCTGTTT │ E-NS1 │ 320 │
├──────┼─────────────┤ │ │
│ │—)TCCATTCTCCCAATCTCCTG │ │ │
├──────┼─────────────┼───────┼─────┤
│ DEN-4 │+)CCATTATGGCTGTGTTGTTT │ NS2a-NS2b │ 398 │
├──────┼─────────────┤ │ │
│ │—)CTTCATCCTGCTTCACTTCT │ │ │
└──────┴─────────────┴───────┴─────┘